- FAMILLES DES BACTERIES 2
- CLASSE DES BACTERIES 1
- GROUPE DE BACTERIES 1
- CLASSIFICATION PHYLOGENETIQUE 1
- EUBACTERIA (CLASSIFICATION PHYLOGÉNÉTIQUE) 1
-
NOMENCLATURE DES BACTERIES
85
- Acetobacter
- Acetobacter aceti
- Acetobacter cerevisiae
- Acetobacter cibinongensis
- Acetobacter Diazotrophicus
- Acetobacter estuniensis
- Acetobacter fabarum
- Acetobacter farinalis
- Acetobacter ghanensis
- Acetobacter indonesiensis
- Acetobacter lambici
- Acetobacter lovaniensis
- Acetobacter malorum
- Acetobacter nitrogenifigens
- Acetobacter oeni
- Acetobacter okinawensis
- Acetobacter orientalis
- Acetobacter orleanensis
- Acetobacter papayae
- Acetobacter pasteurianus
- Acetobacter peroxydans
- Acetobacter persici
- Acetobacter polyoxogenes
- Acetobacter pomorum
- Acetobacter senegalensis
- Acetobacter subgen
- Acetobacter syzygii
- Acetobacter thailandicus
- Acetobacter tropicalis
- Acetobacter sicerae
- Acinetobacter calcoaceticus
- Agrobacterium
- Bacillus alcalophilus
- Bactéries à gram positif
- Bacillus anthracis
- Bacillus cereus
- Bacillus circulans
- Bacillus megaterium
- Bacillus mycoides
- Bacillus pseudomycoides
- Bacillus sp.
- Bacillus sphaericus
- Bacillus thuringiensis
- Bacillus thuringiensis kurstaki
- Bacillus weihenstephanensis
- Gluconacetobacter entanii
- Gluconacetobacter europaeus
- Gluconacetobacter hansenii
- Gluconacetobacter intermedius
- Gluconacetobacter johannae
- Gluconacetobacter liquefaciens
- Gluconacetobacter oboediens
- Gluconacetobacter xylinus
- Gluconobacter
- Gluconobacter albidus
- Gluconobacter asaii
- Gluconobacter cerevisiae
- Gluconobacter cerinus
- Gluconobacter frateurii
- Gluconobacter japonicus
- Gluconobacter kanchanaburiensi
- Gluconobacter kondonii
- Gluconobacter morbifer
- Gluconobacter thailandicus
- Gluconobacter oxydans
- Lactobacillus brevis
- Lactobacillus buchneri
- Lactobacillus casei
- Lactobacillus curvatus
- Lactobacillus delbrueckii
- Lactobacillus diolivorans
- Lactobacillus fermentum
- Lactobacillus fructivorans
- Lactobacillus jensenii
- Lactobacillus kunkeei
- Lactobacillus leichmannii
- Lactobacillus mali
- Lactobacillus nagelii
- Lactobacillus paracasei
- Lactobacillus plantarum
- Lactobacillus vini
- Lysinibacillus sphaericus
- Oenococcus oeni
- Pediococcus damnosus
- Streptobacillus moniliformis
- DEFINITIONS, CLASSIFICATION ET NOMENCLATURE DES BACTERIES 1
- ORDRE DES BACTERIES 0
-
LES BOTANISTES
48
- Acharius Erik
- Acuna Galé Julian Baldomero
- Adam Johannes Michael Friedrich
- Adamson Michel
- Adamson Robert Stephen
- Afzelius Adam
- Agardh Carl Adolph
- Agardh Jacob Georg
- Ager Nicolas
- Agosti Giuseppe
- Airy Shaw Herbert Kenneth
- Aitchison James Edward Tierney
- Aiton William
- AitonWilliam Townsend
- Ake Assi Laurent
- Al-Baitar Abu Muhammad
- Albertini Johannes Baptista Von
- Albow Nikolai Michailowitsch
- Alderwerelt Van Rosenburgh Cornelis Rugier Willem Karen Van
- Aldrovandi Ulisse
- Alexandre Paul
- Allamand Frédéric-Louis
- Allard Gaston
- Allemão Francisco Freire
- Allemend Jules
- Allioni Carlo
- Allorge Pierre
- Alpini Prospero
- Alston Arthur Hugh Garfit
- Alston Charles
- Alzate Jose Antonio
- Ambrosini Bartolomeo
- Amman Johann
- Amoreux Pierre-Joseph
- Anaxagore
- Anaximandre
- Anderson Edgar Shannon
- Anderson James
- Andrews Henry Charles
- Andrews Henry Nathaniel
- Anguillara Luigi
- Arber Agnes
- Arduino Pietro
- Arechavaleta Y Balpardo
- Arenes Jean
- Arnold Chester Arthur
- Empédocle
- Linné Carl Von
- LISTE DES BOTANISTES 1
- LES ORDRES DES INSECTES 1
- LES SUPER-ORDRES DES INSECTES 1
-
LES FAMILLES DES INSECTES
81
- Acrididae
- Aderidae
- Alexiidae
- Alleculidae
- Anobiidae
- Anthicidae
- Anthribidae
- Apionidae
- Aspidiphoridae
- Biphyllidae
- Bostrichidae
- Bruchidae
- Bruchinae
- Buprestidae
- Byrrhidae
- Cantharidae
- Carabidae
- Cerambycidae (Capricornes, Longicornes)
- Cholevinae
- Chrysomelidae
- Cicadidae
- Ciidae
- Clambidae
- Cleridae
- Coccinellidae
- Colydiidae
- Cryptophagidae
- Curculionidae
- Dermestidae
- Derodontidae
- Dytiscidae
- Elateridae
- Elmidae
- Erebidae
- Eucnemidae
- Gracillariidae
- Heterodera medicaginis
- Histeridae
- Hydraenidae
- Hydrophilidae
- Kateretidae
- Laemophloeidae
- Languriidae
- Latridiidae
- Leiodidae
- Limnichidae
- Lycidae
- Lyctidae
- Malachiinae – Malachiidae
- Melandryidae
- Meloidae
- Melyridae
- Monotomidae
- Mordellidae
- Nicrophorinae
- Nitidulidae
- Noctuidae
- Oedemeridae
- Phalacridae
- Phloiophilidae
- Pselaphidae
- Ptiliidae
- Rhynchitidae
- Scarabaeidae
- Scirtidae
- Scolytidae
- Scraptiidae
- Scydmaenidae
- Silphidae
- Silphinae
- Silvanidae
- Sphindidae
- Sphingidae
- Staphylinidae
- Staphylinoidea
- Tenebrionidae
- Throscidae
- Tortricidae
- Trogossitidae
- Urodidae
- Urodontinae
-
LES SOUS-FAMILLES DES INSECTES
50
- Anthicinae
- Anthiinae (Carabidae)
- Anthribinae
- Brachininae
- Buprestinae
- Caelifera
- Calliptaminae
- Carabinae
- Catantopinae
- Chalcophorinae
- Choraginae
- Chrysobothrinae
- Chrysochroinae
- Copiocerinae
- Coptacrinae
- Cyrtacanthacridinae
- Egnatiinae
- Elaphrinae
- Eremogryllinae
- Eucradinae
- Euryphyminae
- Eyprepocnemidinae
- Galbellinae
- Gomphocerinae
- Habrocneminae
- Harpalinae
- Hemiacridinae
- Julodinae
- Lepturinae
- Lepturini
- Leptysminae
- Marellia remipes
- Melanoplinae
- Nebriinae
- Oedipodinae
- Ommatolampinae
- Oxyinae
- Pauliniinae
- Paussinae
- Platyninae
- Polycestinae
- Proctolabinae
- Psydrinae
- Pterostichinae
- Ptininae
- Rhytidochrotinae
- Spathosterninae
- Teratodinae
- Tropidopolinae
- Urodontinae
- LES SOUS-ORDRES DES INSECTES 1
- LES SUPER-ORDRES DES INSECTES 0
- LA CLASSIFICATION DES INSECTES 4
-
NOMENCLATURE DES INSECTES
371
- Aaata
- Abacetus
- Abax
- Abax parallelepipedus
- Abia candens
- Abia sericea
- Abraxas grossulariata
- Abrostola tripartita
- Acalitus phloecoptes (Acarien des bourgeons du prunier)
- Acanthaclisis baetica (Fourmilions)
- Acanthaclisis occitanica
- Acanthocinus aedilis (Acanthocine charpentier)
- Acanthocinus griseus
- Acantholyda erythrocephala
- Acanthoscelides obtectus (Bruche du haricot)
- Acanthosoma haemorrhoidale
- Acaromimus
- Acaromimus americanus
- Acherontia atropos (Sphinx tête de mort)
- Acheta domesticus (Grillon domestique)
- Acilius sulcatus
- Acleris
- Aclypea opaca - Blitophaga opaca- Silpha opaca (Silphe de la betterave)
- Acrida
- Acrida ungarica
- Acrocera orbicula
- Acrolepiopsis assectella (La teigne du poireau)
- Acronicta leporina
- Acrotylus insubricus
- Aculops lycopersici - Vasates lycopersici - Vasates destructor (agent de l'acariose bronzé de la tomate)
- Aculus schlechtendali - Arachnida - Acari - Eriophyidae (Phytopte libre du pommier)
- Acyrthosiphon pisum - Macrosiphum - Acyrthosiphon onobrychis (Puceron vert ou rose du pois)
- Aderus
- Adoxophyes orana - Capua réticulana (Tordeuse capua de la pelure)
- Aedes albopictus - Stegomyia albopicta - Moustique-tigre
- Aglaope infausta (Zygène de l'amandier)
- Agonum
- Agrilus
- Agriotes lineatus (Taupin)
- Agromyza (Mouches mineuses)
- Agrotis ipsilon - Agrotis ypsilon - Lycophotia ipsilon - Scotia ipsilon (Noctuelle ipsilon)
- Agrotis segetum - Scotia segetum - Feltia segetum (Noctuelle des moissons)
- Aleurobus olivinus Silvestri (Aleurode noir de l'olivier)
- Aleurothrixus floccosus (Aleurode floconneux des citrus)
- Althaesia
- Amara
- Amara aenea
- Amara aulica
- Amara familiaris
- Anarsia lineatella (Petite mineuse du pêcher
- Anobium
- Anobium punctatum - Vrillette domestique
- Anobocaelus
- Antheraea pernyi - Ver à soie Tussah
- Antheraea yamamai - Saturnie du chêne du Japon
- Anthia mannerheimi
- Anthia wayheimi
- Anthonomus grandis (Charançon du cotonnier)
- Anthonomus pomorum (Anthonome du pommier)
- Anthonomus pyri (Anthonome du pommier)
- Anthonomus rubi (Anthonome du fraisier et du framboisier)
- Aonidiella aurantii - Aspidiotus aurantii (Pou de Californie)
- Aphanostigma piri (Phylloxéra du poirier)
- Aphelanchoïde ritzemabosi (L'anguillule ou nématode du chrysanthème)
- Aphelanchoïdes
- Aphelenchoides fragariae - Aphelanchoides olesistus - Aphelanchus fragariae - Aphelanchus olesistus (Anguillule du fraisier et des fougères)
- Aphis craccivora - Aphis laburni - Aphis medicaginis (Puceron noir de la luzerne)
- Aphis fabae Scopoli - Doralis fabae (puceron noir de la fève)
- Aphis forbesi Weed - Cerosipha forbesi (Puceron vert du fraisier, Puceron des racines du fraisier)
- Aphis gossypii Glover - Cerosipha gossypii (Puceron du cotonnier, Puceron du melon)
- Aphis grossulariae Kaltenbach - Aphidula grossulariae (Puceron vert du groseillier épineux)
- Aphis nasturtii Kaltenbach - Aphidula rhamni (Puceron du nerprun)
- Aphis pomi - Aphis mali - Aphidula pomi - Doralis pomi (Puceron vert non migrant du pommier)
- Aphis schneideri (Groseille à maquereau - puceron du saule)
- Aphis spiraecola Pagenstecher - Aphis citricola (Puceron vert des citrus, Puceron des spirées)
- Apion
- Apion carduorum - Ceratapion carduorum (Apion de l'artichaut)
- Apion pisi (Apion des bourgeons du pois, Apion du pois)
- Apion trifolii - Apion aestivum Germar (Petit Apion du trèfle)
- Aptinoderus
- Aptinoderus cyaneus
- Aptinoderus cyanipennis
- Aptinoderus funebris
- Aptinoderus umvotianus
- Aptinus
- Aptinus acutangulus
- Aptinus bombarda - Scarabée bombarde noir
- Aptinus cordicollis
- Aptinus creticus
- Aptinus hovorkai
- Aptinus lugubris
- Aptinus merditanus
- Araecerus
- Araecerus constans
- Araecerus cumingi
- Araecerus fasciculatus - coffea
- Araecerus levipennis
- Araecerus varians
- Araecerus vieillardi
- Archips podana – Cacoecia podana (Tordeuse des fruits)
- Archips rosana - Cacoecia rosana - Choristoneura rosanaceana (Tordeuse des buissons)
- Argyrotaenia ljungiana -Argyrotaenia pulchellana - Eulia pulchellana (Petite tordeuse de la grappe)
- Ariotus
- Ariotus luteolus
- Ariotus quercicola
- Ariotus subtropicus
- Aspidiotus nerii Bouché (Cochenille du laurier-rose)
- Athalia rosae - Athalia colibri (Tenthrède de la rave)
- Atomaria linearis (Atomaire de la betterave)
- Aulacorthum solani -Dysaulacorthum vincae (Puceron strié de la digitale et de la pomme de terre, Puceron à taches vertes de la pomme de terre)
- Autographa gamma - Phytometra gamma - Plusia gamma (Noctuelle gamma)
- Bemisia tabaci (Aleurode du tabac)
- Blaberus
- Blaberus craniifer
- Blaberus discoidalis
- Blaberus giganteus
- Blaniulus guttulatus (Blaniule mouchetée)
- Brachinulus
- Brachinus
- Brachinus adustipennis
- Brachinus albarracinus
- Brachinus alexandri
- Brachinus alexiguus
- Brachinus alternans
- Brachinus americanus
- Brachinus andalusiacus
- Brachinus angustatus
- Brachinus baeticus
- Brachinus bellicosus
- Brachinus berytensis
- Brachinus cibolensis
- Brachinus costipennis
- Brachinus crepitans
- Brachinus cyanipennis
- Brachinus cyanochroaticus
- Brachinus efflans
- Brachinus ejaculans
- Brachinus elegans
- Brachinus elongatulus
- Brachinus favicollis
- Brachinus fulminatus
- Brachinus fumans
- Brachinus geniculatus
- Brachinus hirsutus
- Brachinus imporcitis
- Brachinus italicus
- Brachinus janthinipennis
- Brachinus lareralis
- Brachinus medius
- Brachinus mexicanus
- Brachinus nigricornis
- Brachinus olgae
- Brachinus pateri
- Brachinus patruelis
- Brachinus pecoudi
- Brachinus pectoralis
- Brachinus phaeocerus
- Brachinus plagiatus
- Brachinus psophia
- Brachinus quadripennis
- Brachinus rugipennis
- Brachinus testaceus
- Brachinus texanus
- Brachinus turkestanicus
- Brachinus vulcanoides
- Brachycaudus cardui - Brachycaudus lateralis - Anuraphis cardui (Puceron de l'artichaut)
- Brachycaudus helichrysi - Anuraphis helichrysi (Puceron vert du prunier)
- Brachycaudus persicae - Brachycaudus persicaecola (Puceron noir du pêcher)
- Brachycaudus prunicola - Appelia prunicola (Puceron brun du pêcher, Puceron brun du prunier)
- Brachycorynella asparagi - Brachycolus asparagi (Puceron de l'asperge)
- Brachynillus
- Brevicoryne brassicae (Puceron cendré du chou)
- Bruchus pisorum (Bruche du pois)
- Bruchus rufimanus (Bruche de la fève)
- Bruchus signaticornis - Bruchus pallidicornis (Bruche des lentilles)
- Byrrhus pilula
- Byturus urbanus - Byturus tomentosus (Ver des framboises)
- Cacopsylla pyri - Psylla pyri (Psylle commun du poirier)
- Calepitrimerus vitis - Phyllocoptes vitis - Epitrimerus vitis (Phytopte de l'acariose de la vigne)
- Calleida punctata
- Calliptamus italicus
- Calomera littoralis
- Calosoma
- Calosoma sycophanta
- Cameraria ohridella - Mineuse du marronnier
- Cantharis
- Cantharis cryptica
- Cantharis fusca
- Capitophorus horni (Puceron vert de l'artichaut)
- Capnodis tenebrionis (Capnode)
- Carabus auratus - Carabe doré
- Cecidophyopsis ribis (Westwood) - Cecidophyes ribis, Eriophyes ribis, Phytoptus ribis (Phytopte du cassissier)
- Cecidophyopsis ribis - Cecidophyes ribis, Eriophyes ribis, Phytoptus ribis (Phytopte du cassissier)
- Ceratitis capitata (Wiedemann) – (Cératite, Mouche méditerranéenne des fruits)
- Ceroplastes rusci (Charançon des siliques de colza)
- Ceuthorhynchus assimilis – (Charançon des siliques de colza)
- Choragus
- Choragus exophthalmus
- Choragus harrisi
- Choragus major
- Choragus sayi
- Choragus striolatus
- Choragus zimmermanni
- Cicindela campestris
- Cicindela chinensis
- Cicindela hybrida
- Cicindela sexguttata - cincindele a six points
- Coccoidea
- Colilodion schulzi
- Coraebus
- Crepidogaster
- Crepidogastrillus
- Crepidogastrinus
- Crepidolomus
- Crepidonellus
- Cryptomyzus ribis -Myzus ribis - Capitophorus ribis - Rhopalosiphum ribis (Puceron jaune du groseillier)
- Cteniopus
- Cteniopus sulphureus
- Cychrus
- Cychrus caraboides
- Cydalima perspectalis (Pyrale du buis)
- Cylindera minuta
- Diphyus
- Ditylenchus dipsaci (Nématode des tiges et des bulbes)
- Ernobius
- Euderopus
- Euxenus
- Euxenus ater
- Euxenus punctatus
- Gomphocerus sibricus
- Gonicoélus
- Habroloma
- Harpalinae
- Harpalus
- Harpalus affinis
- Heliotaurus
- Heterodera avenae (Nématode des céréales)
- Heterodera carotae
- Heterodera ciceri
- Heterodera cruciferae
- Heterodera fici (Nématode à kyste)
- Heterodera glycines
- Heterodera goettingiana
- Heterodera medicaginis
- Heterodera oryzae
- heterodera rostochiensis
- Heterodera sacchari
- Heterodera schachtii
- Heterodera tabacum
- Heterodera trifolii
- Heterodia rostochiensis
- Hiperantha testacea
- Holometabola
- Homotrysis
- Ichneumon
- Ichneumon extenseur
- Ichneumon wasps (guêpes d’ichneumon)
- Ichneumon xanthorius
- Ichneumonoidea
- Julodis
- Lasioderma
- Lebia
- Lebia cruxminor
- Leptinotarsa decemlineata – Doryphore
- Leptoglossus occidentalis (Punaise du pin)
- Lomaspilis marginata (La marginée ou bordure entrecoupée)
- Loricera
- Lymantrichneumon disparis
- Marellia remipes
- Mastax
- Mastax albonotata
- Mastax alternans
- Mastax annulata
- Mastax brittoni
- Mastax burgeoni
- Mastax Carissima
- Mastax confusa
- Mastax congoensis
- Mastax elegantula
- Mastax en Floride
- Mastax euanthes
- Mastax extrema
- Mastax Formosana
- Mastax forteculpta
- Mastax fulvonotata
- Mastax gestroi
- Mastax Hargreavesi
- Mastax histrio
- Mastax Humilis
- Mastax Kivuensis
- Mastax Klapperichi
- Mastax Kulti
- Mastax laeviceps
- Mastax latefasciata
- Mastax liebkei
- Mastax louwerensi
- Mastax Moesta
- Mastax nana
- Mastax nepalensis
- Mastax okavango
- Mastax ornata
- Mastax ornatella
- Mastax pakistana
- Mastax parreyssi
- Mastax philippina
- Mastax poecila
- Mastax pulchella
- Mastax pygmaea
- Mastax Raffrayi
- Mastax Rawalpindi
- Mastax royi
- Mastax rugiceps
- Mastax saganicola
- Mastax senegalensis
- Mastax striaticeps
- Mastax subornatella
- Mastax sudanica
- Mastax tessmanni
- Mastax Thermarum
- Mastax tratorius
- Mastax vegeta
- Mecyclothorax
- Megacephala carolina
- Melanaphis pyrarius - Geoktapia pyrarius - Aphis pyrastri Boisduval - Melanaphis pyraria (Puceron brun du poirier)
- Meloidogyne (Nématode à galles des racines)
- Meloidogyne hapla
- Meloidogyne incognita
- Mengea tertiaria
- Nasonovia ribisnigri - Aphis lactucae (Puceron de la laitue)
- Nebria
- Nebriinae
- Notiophilus
- Notiophilus biguttatus
- Notiophilus palustris
- Notiophilus rufipes
- Odacantha
- Odacantha melanura
- Otiorhynchus cribricollis Gyllenhall - Arammichnus cribricollis - Otiorhynchus terrestris Marseul (Otiorhynque de l'olivier)
- Oxymirus cursor
- Perapion
- Pheropsophus
- Pheropsophus aequinoctialis
- Pheropsophus africanus
- Pheropsophus jessoensis
- Philophylla heraclei (Acidia heraclei) (Mouche du céleri)
- Plecoptera
- Pratylenchus
- Pseudaulacaspis pentagona Targioni -Aulacaspis pentagona - Diaspis pentagona (Cochenille du mûrier)
- Ptinomorphus
- Ptinus
- Quadraspidiotus perniciosus - Aspidiotus perniciosus - Diaspidiotus perniciosus (Pou de San-José)
- Rhagium inquisitor
- Rhopalapion longirostre - Apion des roses trémières
- Rosalia alpina (Rosalie des Alpes)
- Samia cynthia - Bombyx de l'ailante
- Sitobion avenae - Aphis avenae - Macrosiphum - Siphonophora cerealis (Puceron des épis de céréales)
- Stegobium paniceum - Vrillette du pain, Vrillette boulangère, Stégobie des pharmacies
- Stenocorus meridianus
- Sternocera
- Strepsiptera
- Stylopidae
- Styphlodrome
- Styphlomerus
- Symphyta (Mouche à scie)
- Synanthedon tipuliformis - Aegeria tipuliformis - Conopia tipuliformis (Sésie du groseillier)
- Tetranychus mcdanieli (Tétranyque de McDaniel)
- Therates – les taux
- Triozocera mexicana
- Urodontus
- Urodontus rotundicollis
- Vespa velutina (Frelon asiatique)
- INTRODUCTION 1
- LES SOUS-ESPECES DES INSECTES 1
- LES TRIBUS DES INSECTES 3
- LES SOUS-CLASSES 2
- LES CLASSES 0
- LES ORDRES DES INSECTES 0
- LES INSECTES
-
NOMENCLATURE DES MALADIES CRYPTOGAMIQUE
64
- Alternaria
- Alternaria alternata
- Alternaria brassicae
- Alternaria carthami
- Alternaria chrysanthemi
- Alternaria cichorii
- Alternaria citri
- Alternaria dauci
- Alternaria helianthi
- Alternaria macrospora
- Alternaria mali
- Alternaria passiflorae
- Alternaria porri
- Alternaria ricini
- Alternaria solani
- Alternaria tomatophila
- Alternaria triticina
- Alternariose
- Anthracnose
- Botrytis cinerea (Pourriture g
- Cercospora longissima (Cercosp
- Chancre
- Colletotrichum
- Colletotrichum acutatum
- Colletotrichum circinans
- Colletotrichum coccodes (Pourr
- Colletotrichum dematiumf. spin
- Colletotrichum gloeosporioides
- Colletotrichum graminicola
- Colletotrichum kahawae
- Colletotrichum musae
- Colletotrichum trifolii
- Elsinoe ampelina
- Elsinoë australis
- Elsinoë batatas
- Elsinoë veneta
- Fusariose
- Gloeosporium orbiculare - Ant
- Glomerella acutata
- Glomerella cingulata
- Glomerella lagenarium
- Hyaloperonospora parasitica
- Hymenoscyphus fraxineus
- Kabatiella caulivora
- Marssonina
- Microdochium panattonianum
- Mycocentrospora acerina
- Myrothecium roridum (Taches su
- Nectria cinnabarina
- Neofabraea alba - Gloeosporios
- Plasmopara viticola
- Pleosporaceae
- Rhytisma acerinum
- Rouilles autoïques et hétéroïq
- Septoria lactucae (Septoriose)
- Siphomycete
- Sordaria macrospora
- Sphaceloma arachidis
- Sphaceloma perseae
- Stegophora ulmea
- Stemphyllium botryosum f. lact
- Ulocladium chartarum
- Vasates quadripedes
- Verticilliose
- INTRODUCTION SUR LES MALADIES CRYPTOGAMIQUE 1
-
NOMENCLATURE DES ARBRES
420
- Abarema
- Abarema abbotii
- Abarema abeywickramae
- Abarema acreana
- Abarema adenophora
- Abarema adenophorum
- Abarema agropecuaria
- Abarema alexandri
- Abarema angulata
- Abarema arborescens
- Abarema aspleniifolia
- Abarema auriculata
- Abarema barbouriana
- Abarema bauchei
- Abarema bigemina
- Abarema borneensis
- Abarema brachystachya
- Abarema callejasii
- Abarema campestris
- Abarema celebica
- Abarema centiflora
- Abarema chochleata
- Abarema claviflora
- Abarema clypearia
- Abarema cochliocarpos
- Abarema commutata
- Abarema contorta
- Abarema cordifolia
- Abarema crateradena
- Abarema cuneadena
- Abarema curvicarpa
- Abarema cyclosperma
- Abarema dalatensis
- Abarema dodonaeifolia
- Abarema dolichadena
- Abarema elliptica
- Abarema ferruginea
- Abarema ferruginea
- Abarema filamentosa
- Abarema filamentosa
- Abarema floribunda
- Abarema fournieri
- Abarema gallorum
- Abarema ganymedea
- Abarema glauca
- Abarema globosa
- Abarema glomeriflora
- Abarema gracillima
- ABAREMA GRANDIFLORA
- ABAREMA HARMSII
- ABAREMA HENDERSONII
- ABAREMA IDIOPODA
- Abarema idiopoda
- ABAREMA JOSEPHI
- Abarema josephi
- Abarema jupunba
- ABAREMA KALKMANII
- ABAREMA KALKMANNII
- Abarema Kerrii
- Abarema Kiahii
- Abarema killipii
- Abarema killipii
- Abarema kinabaluensis
- Abarema kuenstleri
- Abarema laeta
- Abarema langsdorffii
- Abarema langsdorfii
- Abarema laxiflora
- Abarema lehmannii
- Abarema leucophylla
- Abarema levelii
- Abarema limae
- Abarema longipedunculata
- Abarema lovellae
- Abarema lucida
- Abarema macradenia
- Abarema maestrensis
- Abarema malinoensis
- Abarema mataybifolia
- Abarema microcalyx
- Abarema microcarpa
- Abarema mindanaensis
- Abarema monadelpha
- Abarema moniliformis
- Abarema motleyana
- Abarema muellerana
- Abarema multiflora
- Abarema multifoliolata
- Abarema muricarpa
- Abarema nediana
- Abarema nipensis
- Abarema novo-guineensis
- Abarema obovalis
- Abarema obovata
- Abarema occultata
- Abarema opposita
- Abarema oppositifolia
- Abarema oxyphyllidia
- Abarema pahangensis
- Abarema pauciflora
- Abarema pellita
- Abarema piresii
- Abarema poilanei
- Abarema quocensis
- Abarema racemiflora
- Abarema racemosa
- Abarema ricoae
- Abarema robinsonii
- Abarema sapindoides
- Abarema scutifera
- Abarema sessiliflora
- Abarema subcoriacea
- Abarema sumbawaensis
- Abarema syringifolia
- Abarema teijsmannii
- Abarema tetraphylla
- Abarema tjendana
- Abarema trapezifolia
- Abarema trichophylla
- Abarema triplinervia
- Abarema turbinata
- Abarema utile
- Abarema utilis
- Abarema villifera
- Abarema villosa
- Abarema waitzii
- Abarema yunnanensis
- Abarema zollerana
- Abies alba (Sapin blanc, sapin pectiné, sapin commun)
- Abies alba « Columnaris »
- Abies alba « Compacta »
- Abies alba « Fastigiata »
- Abies alba « Globosa »
- Abies alba « King’s Dwarf »
- Abies alba « Microphylla »
- Abies alba « Munsterland »
- Abies alba « Pectinata »
- Abies alba « Pendula »
- Abies alba « Pyramidalis »
- Abies alba « Schwarzwald »
- Abies alba « Virgata »
- Abies amabilis
- Abies amabilis « Spreading Star »
- Abies balsamea (Sapin baumier)
- Abies balsamea « Hudsonia »
- Abies balsamea « Nana Compacta »
- Abies balsamea « Nana »
- Abies balsamea « Nudicaulis »
- Abies balsamea « Piccolo »
- Abies balsamea « Verkades Prostrate »
- Abies bommuelleriana
- Abies borisii-regis (Sapin de Bulgarie)
- Abies bracteata (Sapin de Santa Lucia, Sapin bractifère)
- Abies cephalonica (Sapin de Céphalonie)
- Abies cephalonica var. apollinis
- Abies cephalonica Var. graeca
- Abies cephalonica var. reginae-amaliae
- Abies cephalonica var. robusta
- Abies cephalonica « Meyer’s Dwarf »
- Abies chayuensis
- Abies chensiensis
- Abies chensiensis subsp. salouensis
- Abies chensiensis subsp. yulongxueshanensis
- Abies chensiensis var. ernestii
- Abies cilicica
- Abies concolor (Sapin du Colorado)
- Abies concolor Var. lowiana « Creamy »
- Abies concolor « Archer’s Dwarf »
- Abies concolor « Argentea »
- Abies concolor « Aurea »
- Abies concolor « Biella »
- Abies concolor « Blue Spreader »
- Abies concolor « Compacta »
- Abies concolor « Fagerhult »
- Abies concolor « Fastigiata »
- Abies concolor « Gable’s Weeping »
- Abies concolor « Hexe »
- Abies concolor « Hortmann’s Igel »
- Abies concolor « Husky Pup »
- Abies concolor « Pendula »
- Abies concolor « Piggelmee »
- Abies concolor « Swif’s Silver »
- Abies concolor « Violacea Prostrata »
- Abies concolor « Violacea »
- Abies concolor « Wattezii »
- Abies concolor « Wintergold »
- Abies delavayi
- Abies delavayi var. georgei
- Abies delavayi « Green Giant »
- Abies delavayi « Major Neishe »
- Abies delavayi « Nana Headfort »
- Abies densa
- Abies engelmanni
- Abies equi-trojani-(cheval de troie)
- Abies fabri
- Abies fargesii
- Abies firma
- Abies firma « Bedgebury »
- Abies forrestii
- Abies fraseri
- Abies fraseri « Rauls Dwarf »
- Abies georgei
- Abies glehnii
- Abies gracilis
- Abies grandis (Sapin de Vancouver, Sapin géant)
- Abies holophyla
- Abies homolepis (Sapin de Nikko)
- Abies homolepis « Tomoni »
- Abies homolepsis « Prostrata »
- Abies insignis
- Abies kawakamii
- Abies koranea « Flava »
- Abies koreana « Blauer Pfiff »
- Abies Koreana « Blue and Silver »
- Abies koreana « Blue Standard »
- Abies koreana « Brevifolia »
- Abies koreana « Cis »
- Abies koreana « Compact Dwarf »
- Abies koreana « Crystal Globe »
- Abies koreana « Delikado »
- Abies koreana « Doni – Tajuso »
- Abies koreana « Festival »
- Abies koreana « Fliegende Untertasse »
- Abies koreana « Gait »
- Abies koreana « Golden Dream »
- Abies koreana « Green Carpet »
- Abies koreana « Green Carpet »
- Abies koreana « Horstmann »
- Abies koreana « Kohout »
- Abies koreana « Lippetal »
- Abies koreana « Luminetta »
- Abies koreana « Molli »
- Abies koreana « Müller Wittbolt »
- Abies koreana « Nisbet »
- Abies koreana « Oberon »
- Abies koreana « Orange Glow »
- Abies koreana « Piccolo »
- Abies koreana « Pinochio »
- Abies koreana « Silberkugel »
- Abies koreana « Silberlocke »
- Abies koreana « Silberperl »
- Abies koreana « Silberzwerg »
- Abies koreana « Silver Show »
- Abies koreana « Silverstar »
- Abies koreana « Starker’s Dwarf »
- Abies koreana « Stolwijk »
- Abies koreana « Taiga »
- Abies koreana « Threave »
- Abies koreana « Tundra »
- Abies koreana « Twergform Wüstemeyer
- Abies koreana – Sapin de Corée
- Abies lasiocarpa
- Abies lasiocarpa var. Arizonica
- Abies lasiocarpa var. arizonica « Compacta »
- Abies lasiocarpa var. Arizonica « Nana »
- Abies lasiocarpa var. « Argentea »
- Abies lasiocarpa « Duflon »
- Abies lasiocarpa « Green Globe »
- Abies lasiocarpa « Kenwith Blue »
- Abies lasiocarpa « Logan Pass »
- Abies lasiocarpa « Mulligans Dwarf »
- Abies lasiocarpa « Witch’s Broom »
- Abies lowiana
- Abies magnifica
- Abies magnifica var. Xanthocarpa
- Abies mariesii
- Abies marocana
- Abies nebrodensis
- Abies nephrolepis
- Abies nimidica « Pendula »
- Abies nordmanniana subsp. equi-trojani
- Abies nordmanniana « Ambrolauri »
- Abies nordmanniana « Barabitz Compact »
- Abies nordmanniana « Barabit’s Compacta »
- Abies nordmanniana « Barabit’s Gold »
- Abies nordmanniana « Barabit’s Spreader »
- Abies nordmanniana « Jaobsen »
- Abies nordmanniana « Pendula »
- Abies nordmanniana « Robusta »
- Abies nordmanniana – Sapin de normann
- Abies nordmianna « Golden Spreader »
- Abies numidica
- Abies numidica « Delicado »
- Abies numidica « Glauca »
- Abies pardei
- Abies pindrow
- Abies pinsapo
- Abies pinsapo var. Marocana
- Abies pinsapo « Aurea »
- Abies pinsapo « Fastigiata »
- Abies pinsapo « Glauca »
- Abies pinsapo « Hamondii »
- Abies pinsapo « Horstmann »
- Abies pinsapo « Horstmanns Nana »
- Abies pinsapo « Pendula »
- Abies pinsapo « Pygmaea » - Epicea de Norvège « Pygmaea »
- Abies pinsapo « Pyramidalis »
- Abies procera
- Abies procera « Blaue Hexe »
- Abies procera « Glauca Procumbens »
- Abies procera « Glauca Prostata »
- Abies procera « Glauca »
- Abies procera « Jeddeloh »
- Abies procera « Noble’s Dwarf »
- Abies procera « Sherwoodii »
- Abies recurvata
- Abies recurvata var. ernestii
- Abies religiosa
- Abies sachalinensis
- Abies sibirica – Sapin de Sibérie
- Abies spectabilis
- Abies squamata
- Abies umbilicata
- Abies veitchii « Hedergott »
- Abies veitchii « Pendula »
- Abies veitchii – Sapin de veitch
- Abies wilmoriniana
- Abies x arnoldiana
- Abies x borisii-regis
- Abies x bornmuelleriana
- Abies x phanerolepis
- Abies x pinsapo cephalonica « Rosemoor Far’m »
- Abies x shastensis
- Abies x vasconcellosiana
- Acanthinophyllum strepitans
- Acer - Erable
- Acer amplum
- Acer buergerianum - Érable trident
- Acer caesium
- Acer campestre - Érable champêtre
- Acer capillipes - Érable jaspé de rouge
- Acer cappadocicum - Érable de Cappadoce
- Acer carpinifolium - Érable à feuilles de charme
- Acer chaneyi
- Acer circinatum
- Acer cissifolium - Érable à feuille de vigne
- Acer davidii - Érable du Père David
- Acer douglasense
- Acer duplicatoserratum
- Acer glabrum - Érable nain
- Acer grandidentatum
- Acer griseum - Érable à écorce de papier
- Acer heldreichii
- Acer japonicum - Érable du Japon
- Acer macrophyllum - Érable à grandes feuilles
- Acer Miyabei - Érable de Miyabe
- Acer monspessulanum - Érable de Montpellier
- Acer negundo - Érable negundo
- Acer nigrum - Érable noir
- Acer opalus - Érable à feuilles d'obier
- Acer palmatum - Érable palmé
- Acer pensylvanicum - Érable de Pennsylvanie
- Acer pentaphyllum - Érable à cinq folioles
- Acer platanoides - Érable plane
- Acer pseudoplatanus - Érable sycomore
- Acer pseudosieboldianum
- Acer pycnanthum
- Acer rubrum - Érable rouge
- Acer rufinerve - Érable à feuilles de vigne, Érable rufinerve, Érable oriental à bourgeons gris, Érable à peau de serpent
- Acer saccharinum - Érable argenté
- Acer saccharum - Érable à sucre
- Acer sempervirens - Érable de Crète
- Acer shirasawanum
- Acer spicatum – Érable à épis
- Acer tataricum
- Acer tataricum ginnala
- Acer triflorum
- Acer tutcheri
- Adenolisianthus
- Aesculus californica - Pavier de Californie
- Aesculus hippocastanum - Marronnier commun - marronnier d'Inde - marronnier blanc
- Ailanthus altissima
- Ailanthus excelsa
- Ailanthus giraldii
- Ailanthus grandis
- Ailanthus integrifolia
- Ailanthus malabarica
- Ailanthus triphysa
- Ailanthus vilmoriniana
- Aiouea angulata
- Amburana cearensis
- Anadenanthera peregrina
- Andradea floribunda
- Anthodiscus montanus
- ARCHIDENDRON
- Archidendron bigeminum
- Archidendron bigeminum
- Archidendron clypearia
- Archidendron contartum
- Astrocaryum triandrum
- Astronium urundeuva
- Attalea septuagenata
- Azeredia
- Bactris
- Bactris coloniata
- Chloroxylon swietenia
- Cochlospermum
- Cochlospermum angolense
- Cochlospermum fraseri
- Cochlospermum gillivraei
- Cochlospermum intermedium
- Cochlospermum noldei
- Cochlospermum planchonii
- Cochlospermum regium
- Cochlospermum religiosum
- Cochlospermum tetraporum
- Cochlospermum vitifolium
- Davidia involucrata
- Dicksonia antarctica (Fougère arborescente commune)
- Dipteronia (Erable d’or et d’argent)
- Dipteronia sinensis (Érable d'or et d'argent)
- Flindersia
- Ginkgo biloba (Arbre aus quarante écus)
- Liquidambar acalycina - Copalme de Chine
- Melia azedarach
- Myracrodruon urundeuva- Astronium urundeuva
- Pourouma cecropiifolia
- Toxicodendron vernicifluum - Vernis du Japon
- Vitex lucens
- Zelkova abeliceaii - zelkova crétoise
- BOURGEONS ET RAMEAUX 0
- DESCRIPTION DES ARBRES 4
- ALISIERS BLANCS LES HAUTES HUTTES DANS LE HAUT RHIN
- AMANDIER DE GARRIGUES SAINTE EULALIE GARD
- AMANDIER DE GARRIGUES SAINTE EULANIE DANS LE GARD
- ARBRE DE JUDÉE COUR WALDNER STEPHAN COLMAR DANS LE HAUT RHIN
- ARBRE DE JUDÉE LA BAZOGE MONTPINÇON DANS LA MAYENNE
- ARBRE DE JUDÉE L’HAY LES ROSES DANS LE VAL DE MARNE
-
NOMENCLATURE DES ARBUSTES
55
- Abelia
- Abelia biflora
- Abelia chinensis
- Abelia engleriana
- Abelia floribunda
- Abelia graebneriana
- Abelia ionandra
- Abelia mosanensis
- Abelia schumannii
- Abelia schumannii « Bumblebee’s »
- Abelia spathulata
- Abelia triflora
- Abelia triflora « Pendula »
- Abelia umbellata
- Abelia uniflora
- Abelia x grandiflora
- Abelia x grandiflora "Aurea"
- Abelia x grandiflora "Compacta"
- Abelia x grandiflora "Francis Mason"
- Abelia x grandiflora "Gold spot"
- Abelia x grandiflora "Gold Strike"
- Abelia x grandiflora « Hopley’s »
- Abelia x grandiflora « Kaleidoscope »
- Abelia x grandiflora « Prostrata »
- Abelia x grandiflora « Semperflorens »
- Abelia x grandiflora « Snowdrift »
- Abelia x grandiflora « Sunrise »
- Abelia x grandiflora « Sunspot »
- Abelia x grandifora « Mariesii »
- Abelia zanderi
- Abelia zanderi 'Little Richard'
- Abelia ~ Confetti
- Abelia ~ Conti
- Abelia ~Edward Gaucher
- Abeliophyllum distichum
- Abeliophyllum distichum « Roseum »
- Abroma augustum –Coton du diable
- Abroma fastuosa
- Allamanda blanchetii
- Allamanda cathartica
- Allamanda neriifolia
- Alyssum murale
- Arctostaphylos manzanita
- Argyrocytisus battandieri - Genêt ananas - Cytisus battandieri
- Aronia arbutifolia
- Brugmansia arborea
- Brugmansia aurea
- Brugmansia ou Datura arborescent, trompette des anges
- Brugmansia sanguinea
- Brugmansia suaveolens
- Brugmansia versicolor
- Ceratostigma minus
- Rhus typhina - Vinaigrier, Sumac de Virginie
- Tecoma capensis « Hammer’s rose »
- Teucrium fruticans
- GLOSSAIRE MYCOLOGIQUE 0
- LA BIOLOGIE DES CHAMPIGNONS 1
- LA CLASSIFICATION DES CHAMPIGNONS 1
- LA DESCRIPTION DES CHAMPIGNONS 1
- LA REPRODUCTION DES CHAMPIGNONS 1
- LA VIE DES CHAMPIGNONS 1
- LE MONDE DES CHAMPIGNONS 1
- LES CHAMPIGNONS TOXIQUES 1
- LES FAMILLES DES CHAMPIGNONS 0
-
NOMENCLATURE DES CHAMPIGNONS
12
- Albatrellus ovinus - (Polypore des brebis)
- Armillaria
- Aureoboletus cramesinus
- Boletus badius - Bolet bai
- Boletus calipes - Bolet à pied creux
- Boletus calopus - Bolet à beau pied
- Boletus chrysenteron - Bolet à chair jaune
- Boletus edutis -cèpe de Bordeaux
- Boletus fechtneri - Bolet de Fechtner
- Boletus luridus - Bolet blafard
- Boletus pinophilus - Bolet pinicola - Bolet des pins
- Boletus piperatus - Bolet poivré
LES PLANTES ADVENTICES - (LES MAUVAISES HERBES)
- AMARANTHACEAE 7
-
APIACEAE
15
- FAMILLE DES APIACEAE
- GRILLE D'IDENTIFICATION DES APIACEAE
- Aethusa cynapium – Éthuse ciguë
- Ammi majus – Ammi élevé
- Anthriscus caucalis – Anthrisque commun
- Bifora radians – Bifora rayonnante
- Caucalis platycarpos – Caucale fausse-carotte
- Daucus carota – Carotte sauvage
- Foeniculum vulgare – Fenouil commun
- Pastinaca sativa – Panais cultivé
- Petroselinum segetum
- Scandix pecten-veneris – Peigne de Vénus
- Tordylium maximum – Tordyle élevé
- Torilis arvensis – Torilis des champs
- Torilis nodosa – Torilis noueux
- ARALIACEAE 2
-
ASTERACEAE
48
- FAMILLE DES ASTERACEAE
- GRILLE D'IDENTIFICATION
- Achillea millefolium
- Ambrosia artemisiifolia - Ambroisie à feuilles d'armoise, Ambroisie élevée, Petite herbe à poux
- Ambrosia trifida - Ambroisie trifide
- Anacyclus clavatus - Anacycle en massue - Anacyclus pubescens - Anthemis clavata - Anthemis tomentosa - Chamaemelum tomentosum
- Anacyclus radiatus
- Anacyclus valentinus - Anacyclus hirsutus - Anacycle de Valence
- Andryala integrifolia
- Anthemis altissima – Cota altissima – Anthémis cota – Anthémis élevée
- Anthemis arvensis - Anthémis des champs
- Anthemis cotula - Anthémis fétide
- Artemisia verlotiorum
- Artemisia vulgaris – Armoise vulgaire
- Bidens tripartica – Bident tripartite
- Calendula arvensis – Anthémis des champs - Souci des champs - Souci sauvage - Souci des Vignes – Gauchefer - Fleur de tous les mois
- Carduus Acicularis - Chardon à aiguilles - Chardon à épingles
- Carduus pycnocephalus – Chardon à tête dense
- Carduus tenuiflorus - Chardon à petits capitules
- Centaurea cyanus - Bleuet des champs - Barbeau bleu - Centaurée bleuet – Audifoin – Blavelle - Casse-lunettes - Fleur de Zacharie
- Chaemelum mixtum – Cladanthus
- Chamaemelum fuscatum - Anthemis praecox - Anthemis fuscata - Ormensis fuscata - Chamomilla fuscata - Anthémis précoce - anthémis brunâtre
- Chondrilla juncea
- Cirsium arvense
- Conyza sumatrensis
- Crepis foetida – Crépis fétide
- Crepis sancta – Crépis de Nîme
- Dittrichia viscosa
- Galactites tomentosa
- Galinsoga quadriradiata
- Glebionis segetum - Chrysanthème des moissons - marguerite dorée - chrysanthème des blés
- Helminthia echioides
- Lactuca serriola
- Lapsana communis – Lampsana co
- Matricaria chamomilla var. rec
- Matricaria discoidea
- Picris hieracioides
- Senecio inaequidens
- Senecio vulgaris
- Silybum marianum - chardon argenté - chardon de Notre-Dame - artichaut sauvage - épine blanche
- Sonchus arvensis
- Sonchus asper
- Sonchus oleraceus
- Taraxacum officinale – Pissenl
- Tripleurospermum inodorum
- Tussilago farfara – Tussilage
- Xanthium orientale subsp. ital
- Xanthium spinosum
- BORAGINACEAE 5
-
BRASSICACEAE
19
- FAMILLE DES BRASSICACEAE
- GRILLE D'IDENTIFICATION
- Arabidopsis thaliana
- Barbarea intermedia
- Calepina irregularis
- Capsella bursa-pastoris
- Cardamine hirsuta
- Diplotaxis erucoides
- Lepidium campestre
- Lepidium draba – Cadaria draba
- Lepidium squamatum
- Myagrum perfoliatum
- Raphanus raphanistrum - Ravene
- Rapistrum rugosum subsp. rugos
- Sinapsis alba – Moutarde blanc
- Sinapis arvensis
- Sinapsis nigra
- Sisymbrium officinale
- Thlaspi arvense
- CAMPANULACEAE 2
- CARYOPHYLLACEAE 7
- CHENOPODIACEAE 8
- CLUSIACEAE 2
- MALVACEAE 2
- POLYGONACEAE 2
- RANUNCULACEAE 1
- GLOSSAIRE 0
- INTRODUCTION SUR LES PLANTES ADVENTICES
-
NOMENCLATURE DES PLANTES ANNUELLES
13
- Abelmoschus esculentus
- Abelmoschus manihot - Aibika
- Abelmoschus manihot « Cream Cup »
- Abelmoschus manihot « Sunset »
- Abelmoschus moschatus « Pacific »
- Anacyclus radiatus
- Brugmansia arborea
- Brugmansia aurea
- Brugmansia ou Datura arborescent, trompette des anges
- Brugmansia sanguinea
- Brugmansia suaveolens
- Brugmansia versicolor
- Datura (Datura stramonium), herbe du diable toxique
-
NOMENCLATURE DES PLANTES AQUATIQUES
16
- Acorus gramineus « Variagatus »
- Caltha natans
- Euryale ferox
- Hydrocotyle
- Hydrocotyle americana
- Hydrocotyle bonariensis
- hydrocotyle formosa
- Hydrocotyle leucocephala
- Hydrocotyle mexicana
- Hydrocotyle quinqueloba
- Hydrocotyle ramiflora
- Hydrocotyle ranunculoides
- Hydrocotyle sibthorpioides
- Hydrocotyle verticillata
- Hydrocotyle vulgaris
- Isoetes bolanderi - Isoète de Bolander
- INTRODUCTION SUR LES PLANTES VIVACES 2
-
NOMENCLATURE DES PLANTES VIVACES
82
- Abelmoschus
- Abelmoschus esculentus
- Abelmoschus manihot
- Abelmoschus manihot "Cream Cut"
- Abelmoschus manihot « Sunset »
- Abelmoschus moschatus
- Abelmoschus moschatus « Pacific »
- Abronia
- Abronia alpinia
- Abronia fragrans
- Abronia latifolia
- Abronia maritima
- Abronia pogonantha
- Abronia umbellata
- Abronia villosa
- Acaena
- Acaena argentea
- Acaena buchananii
- Acaena caesiiglauca
- Acaena inermis
- Acaena microphylla
- Acaena myriophylla
- Acaena novae-zelandiae
- Acaena ovalifolia
- Ajuga genevensis
- Alyssum murale
- Alyssum saxatile
- Amsonia ciliata
- Atropa belladonna (Belladone)
- Calochortus
- Chondrilla juncea - Chondrille à feuilles de joncs - Chondrille effilée - Chondrille à tige de jonc - Salade à bûches
- Cortaderia richardii (Herbe de la pampa)
- Cortaderia selloana (Herbe da la pampa) (gynerium)
- Doronicum clusii
- Echinops sphaerocephalus - Oursin à têtes rondes
- Gynura aurantiaca « Purple Passion »
- Helleborus (Ranunculaceae)
- Helleborus argutifolius - Hellébore de Corse
- Helleborus croaticus
- Helleborus dumetorum
- Helleborus foetidus
- Helleborus foetidus - Hellébore fétide
- Helleborus grandorfensis « Ice n'Roses White »
- Helleborus liguricus
- Helleborus lividus subsp. Corsicus
- Helleborus multifidus
- Helleborus multifidus subsp. Serbicus
- Helleborus niger
- Helleborus odorus
- Helleborus orientalis - Rose de carême
- Helleborus purpurascens - Hellébore pourpre
- Helleborus thibetanus
- Helleborus thibetanus
- Helleborus torquatus - Hellébore de Serbie
- Helleborus viridis - Hellébore vert
- Helleborus viridis subsp. Occidentalis
- Lespédéza
- Lycopodium annotinum
- Pelargonium citronellum
- Pelargonium crispum – Géranium odorant
- Pelargonium cucullatum - Géranium à feuilles en entonnoir
- Pelargonium fulgidum
- Pelargonium graveolens – Pélargonium rosat
- Pelargonium hederaefolium - Géranium lierre, Géranium des balcons
- Pelargonium X domesticum - Pélargonium des fleuristes, Pélargonium régal, Géranium à grandes fleurs
- Pelargonium ×hortorum – Pélargonium zonale
- Primula (primevère)
- Rheum (Rhubarbe)
- Rosa xanthina « Canary Bird »
- Ruta chalepensis - Rue de Chalep
- Symphytum (Consoude)
- Symphytum asperum - Consoude hérissée - Consoude rude
- Symphytum azureum - Consoude bleue
- Symphytum bulboseum - Consoude bulboseum
- Symphytum caucasicum - Consoude du Caucase
- Symphytum grandiflorum - Consoude à grandes fleurs
- Symphytum gussonei - Consoude gussonei
- Symphytum gussonei - Consoude gussonei
- Symphytum officinale - Consoude officinale
- Symphytum officinale - Consoude officinale
- Tanacetum vulgare (La Tanaisie commune)
- Tanacetum vulgare (La Tanaisie commune) (Chrysanthemum vulgare )
-
NOMENCLATURE DES ROSIERS
15
- Rosa moyesii « Geranium »
- Rosa rugosa « Hansa »
- Rosa x gallica « Complicata »
- Rosa xanthina « Canary Bird »
- Rosa « Belle Amour »
- Rosa « Celile Brünner »
- Rosa « Centenaire de Lourdes »
- Rosa « Clair Matin »
- Rosa « Claude Monet »
- Rosa « Duchesse de Brabant »
- Rosa « Elina »
- Rosa « Fluorescent »
- Rosa « Glamis Castle »
- Rosa « Graham Thomas »
- Rosa « Madame Caroline Testout »
- INTRODUCTION 0
- Mastigomycota
- Glomeromycota
- Basidiomycota
- Ascomycota
- Fungi
- Zygomycota
- Chytridiomycota
- Rhodophyta
- Prasinophyceae
- Glaucophyta
- Bacillariophyta
- Psilotopsida
- Equisetidae
- Pinophyta
- Gnetophyta
- Ginkgophyta
- Cycadophyta
- Système d'information taxonomi
- Pteridophyta
- Ophioglossophyta
- Lycopodiophyta
- Embryophyta
- MARCHANTIOPHYTA
- Charophyta
- Chlorophyta
- INFRA-EMBRANCHEMENT
- SOUS-EMBRANCHEMENT
- EMBRANCHEMENT (BIOLOGIE)
- SUPER EMBRANCHEMENT
- INFRA-REGNE
- RAMEAU (BIOLOGIE)
- SOUS-REGNE
- REGNE (BIOLOGIE)
- LES EMPIRES
- CLASSE
- SUPER CLASSE
- MICRO - EMBRANCHEMENT
- DOMAINE
- SUPER - REGNE
- Bryophyta
- Systématique
- RANG TAXONOMIQUE
- Phylogénie
- Synapomorphie
- Arbre phylogénétique
- Cladistique
- Classification phylogénétique
- Classification linnéenne
- Plan d'organisation
- INTRODUCTION
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Roussillon

Nuageux
- Min: 11 °C
- Max: 15 °C
- Vent: 11 kmh 190°
- BOTANISTE JEAN-MARC GIL TOUT SUR LA BOTANIQUE /
- LA BOTANIQUE /
- LES MALADIES CRYPTOGAMIQUES /
- NOMENCLATURE DES MALADIES CRYPTOGAMIQUE /
- Gloeosporium orbiculare - Anthracnose ou Nuile rouge
Gloeosporium orbiculare - Anthracnose ou Nuile rouge
Gloeosporium orbiculare (syn. Colletotrichum orbiculare) est une espèce de champignons ascomycètes de la famille des Dermateaceae.
C'est un champignon phytopathogène, responsable de l'anthracnose des Curcubitacées, ou nuile rouge.
La forme téléomorphe (sexuée) est Glomerella lagenaria.
Gloeosporium orbiculare
Symptômes sur feuille de concombre (Cucumis sativus L.)
Gloeosporium orbiculare
(Berk.) Berk. 18761
Taxinomie
Synonymes
Selon Catalogue of Life (17 août 2015) :
- Colletotrichum lagenaria (Pass.) Ellis & Halst. 1893
- Colletotrichum oligochaetum Cavara 1889
- Colletotrichum orbiculare (Berk.) Arx 1957
- Cytospora orbicularis Berk. 1838
- Fusarium lagenaria Pass. 1871
- Gloeosporium lagenaria (Pass.) Sacc. & Roum. 1880
- Glomerella cingulata var. orbiculare S.F. Jenkins & Winstead 1962
- Glomerella lagenaria (Pass.) F. Stevens 1931 (téléomorphe)
- Myxosporium orbiculare (Berk.) Berk. 1860
- Sirogloea orbicularis (Berk.) Arx 1957
Liste des non-classés
Selon NCBI (17 août 2015) :
- non-classé Colletotrichum orbiculare MAFF 240422
Classification : Fungi, Ascomycota, Sordariomycetes, Sordariomycetidae, Incertae sedis, Glomerellaceae
- téléomorphe : Glomerella lagenaria (Pass.) F. Stevens [comme 'lagenarium'], (1931)
- synonymie : Colletotrichum lagenaria (Pass.) Ellis & Halst. [comme 'lagenarium'], (1893)
- dénomination anglaise : anthracnose ; dénomination espagnole : antracnosis
En préambule, soulignons qu'on désigne sous le nom de nuiles des cucurbitacées, deux maladies fongiques bien différentes entraînant l'apparition de lésions caractéristiques sur les fruits :
- la nuile grise ou cladosporiose induite par Cladosporium cucumerinum ;
- la nuile rouge (dénommée autrefois « Picotte » dans le Sud-ouest de la France), qui est provoquée par Colletotrichum orbiculare, l'agent de l'anthracnose des cucurbitacées. Cette maladie est inféodée aussi bien aux régions tempérées qu'aux zones de production subtropicales et tropicales.
L'anthracnose est connue depuis la fin du 19ème siècle ; en effet, cette maladie fut décrite pour la première fois en Italie en 1867. Elle est largement répartie dans le monde, sur tous les continents, et sévit surtout dans les pays à climat humide et/ou dans ceux où l'emploi de la protection chimique des plantes est assez faible. Notons aussi qu'elle affecte plus ou moins de nombreuses cucurbitacées. Elle a été signalée sur calebasse, citrouille, concombre, courge, courge spaghetti, courgette, christophine, giraumon, margose, melon, pastèque, pâtisson, potiron, Luffa spp. Momordica charantia ...
Les conséquences économiques de l'anthracnose sont très variables d'un pays à l'autre. Lorsque cette maladie se manifeste, ses répercussions ne sont pas négligeables, entraînant notamment une baisse de rendement, une diminution de la qualité des fruits, et des pertes en cours de stockage et de commercialisation.
En France, l'anthracnose est devenue une "curiosité" que l'on observe parfois dans les jardins d'amateurs, essentiellement sur melon, pastèque et quelques courges. Ce champignon est probablement très sensible aux fongicides, leur emploi sur cucurbitacées a contribué à le contrôler et l'éliminer progressivement.
De nombreuses cucurbitacées sont affectées par l'anthracnose. Colletotrichum orbiculare peut s'attaquer aussi bien aux plantules en pépinière qu'aux plantes adultes, occasionnant des symptômes sur les organes aériens des plantes : feuilles, tiges, et notamment les fruits. Soulignons que ces symptômes sont plutôt identiques entre espèces de cucurbitacées. C'est pour cette raison que nous ne les détaillerons pas pour chacune d'entre-elles, mais qu'une description assez générique est proposée. Ajoutons enfin qu'ils apparaissent plutôt, dans un premier temps, sur quelques plantes localisées en foyers.
En France, ce sont surtout les fruits des courges qui sont affectés. Des petites taches graisseuses, chancreuses et/ou liégeuses sont d'abord observées sur ces derniers. Par la suite, elles deviennent rondes à ovales, déprimées, cicatrisant mal en périphérie et prenant une teinte brune à noire (figures 1 à 4). Soulignons que ces lésions sont souvent recouvertes par des ponctuations noires (stromas) et de masses gélatineuses rose saumon (acervules productrices de nombreuses spores) à l'origine de l'appellation nuile rouge. Ces fructifications sont parfois disposées en cercles concentriques (figures 5 et 6) et qu'un feutrage mycélien blanc est visible sur les lésions. Soulignons que les symptômes sur ces derniers peuvent apparaître aussi bien en cours de culture que durant leur conservation et leur commercialisation.
Sur feuilles, C. orbiculare provoque d'abord des petites taches huileuses, devenant rapidement brunes à brun rougeâtre, puis nécrotiques. Celles-ci se prolongent parfois sur les nervures ou s'initient à partir de ces dernières. De forme circulaire à quelque peu angulaire, leur taille peut dépasser 1 cm et elles peuvent être entourée d'un halo translucide à jaunâtre. Les tissus au centre des lésions finissent par se dessécher et peuvent se détacher du limbe.
Signalons que les attaques sur feuilles se produisent plus particulièrement dans les cultures de pleins champs. Elles peuvent être à l'origine de défoliations, parfois rapides et importantes, et ainsi augmenter les dégâts sur fruits liés aux effets du soleil.
En fonction des espèces affectées, les confusions de diagnostic sur feuilles sont possibles avec plusieurs autres maladies aériennes des cucurbitacées : la cladosporiose surtout, mais aussi l'alternariose, la septoriose.
Sur les tiges et les pétioles, ce champignon forme des lésions huileuses plus ou moins allongées et légèrement déprimées desquelles perle parfois un exsudat brun. Si les conditions climatiques sont favorables, ces lésions s'étendent, confluent et se couvrent aussi de petites masses roses à orangées. Notons qu'elles peuvent se développer à tout endroit de la tige et des pétioles, et les fragiliser. C'est notamment le cas lorsqu'elles ont donné lieu à des éclatements.
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Fig. 5
Fig. 6
Biologie, épidémiologie
Colletotrichum orbiculare se conserve durant l'hiver dans le sol, en particulier sur les débris végétaux, ou à partir de fumiers à paille persistant jusqu'à 5 années sur ces derniers. Les masses stromatiques (figure 1), qu'il forme sur les fruits, représentent une forme de conservation certaine.
De plus, c'est un champignon dit séminicole car il peut se maintenir aussi sur les graines qui se contaminent lors de leur extraction à partir de fruits infectés.
Ajoutons qu'il se conserve probablement sur diverses cucurbitacées cultivées ou sauvages dans les régions où les conditions climatiques permettent leur développement toute l'année. Il a été signalée sur : calebasse, citrouille, concombre, courge, courge spaghetti, courgette, christophine, giraumon, margose, melon, pastèque, pâtisson, potiron, Luffa spp., Momordica charantia ...
- Pénétration et invasion
Les conidies de C. orbiculare germent à la surface des organes végétaux pollués, et forment un appressorium, à l'extrémité du court tube germinatif, qui lui permet de se fixer et de pénétrer directement les tissus. Notons que la production de mélanine par ce champignon serait essentielle à sa pénétration dans la plante hôte. Par la suite, le mycélium, principalement intracellulaire, envahit les tissus. L'invasion a lieu en approximativement 72 heures après l'arrivée de spores sur les organes végétaux, et les premiers symptômes apparaissent en moins d'une semaine après l'infection.
- Sporulation et dissémination
Comme nous l'avons précisé précédemment, C. orbiculare produit en cinq jours environ, si les conditions climatiques le permettent, des acervules (figures 2 et 3) sur les lésions foliaires ou sur celles localisées sur les tiges et les fruits. Ces structures, matérialisant sa reproduction asexuées, génèrent d'abondantes conidies (13-19 x 4-6 µm) (figure 4) regroupées sous la forme d'un mucus qui sont disséminées de différentes façons :
- par l'eau et les éclaboussures d'eau survenant à la suite de pluies, de ruissellements, de condensations, ou d'irrigations par aspersion ;
- par le vent transportant notamment les fines gouttelettes d'eau. Ainsi, la maladie se propage souvent rapidement au cours de gros orages venteux ;
- par les ouvriers durant les opérations culturales et les outils agricoles ;
- par certains insectes.
Notons que les graines contaminées contribuent également à la dissémination de cette maladie, et parfois sur de longues distances.
La forme parfaite ou téléomorphe de ce champignon est rarement observée dans la nature.
- Conditions favorables à son développement
L'’humidité surtout, la température à un moindre degré, influencent les épidémies d'anthracnose sur cucurbitacées.
Les contaminations ont souvent lieu à la suite de périodes humides, à la faveur des pluies et d'irrigations par aspersion. Elles s'effectuent par exemple en 24 heures à 100% d'humidité et pour des températures comprises entre 19 et 24°C. Notons que les spores germent à des températures comprises entre 5 et 30°C, elles résistent mal à la dessiccation une fois disséminées. L'appressorium est au contraire très résistant. De plus, la fréquence des infections croit proportionnellement avec la durée d'humidité des feuilles, ceci quelque soit la température. La température optimale d'infection se situerait entre 21 et 24°C.
Quelques études réalisées dans divers pays complètent ces données notamment :
- en Chine, l'anthracnose se manifesterait surtout entre 20 et 30°C, et son extension serait réduite à une température de l'air inférieure à 20°C. Les conditions optimales sont des températures comprises entre 25-30°C, plus 50 mm de précipitations et une humidité relative supérieure à 80 % ;
- en Inde, durant la période des moussons, les taux d'infection seraient maximum à des températures comprises entre 25 et 32°C, et une humidité relative supérieure à 90 % le matin et de 80 % le soir, associée à des précipitations.
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Méthodes de protection
L'anthracnose ne nécessite normalement pas en France de traitements fongicides spécifiques sur courgette, et à un moindre degré sur courges. Cette maladie n'est normalement pas dommageable sur ces cucurbitacées. De plus, les traitements anti-oïdium réalisés sur la culture suffisent à limiter le développement du champignon responsable. Si ce n'est pas le cas, nous vous conseillons de suivre les mesures suivantes.
- En cours de culture
Si des symptômes de Colletotrichum orbiculare sont observés sur des jeunes fruits, voire d'autres organes aériens, des pulvérisations de fongicides doivent être réalisées. Plusieurs matières actives ou associations de matières actives* sont homologuées pour un usage « anthracnose » sur courgette en France (e-phy). Notons que les applications devront être renouvelées tous les 10 jours et après chaque pluie. Leur efficacité est parfois limitée car il est souvent difficile d’atteindre le champignon sur les fruits.
Il convient d'éviter les irrigations par aspersion. Si elles sont indispensables, elles seront réalisées le matin afin que la végétation ressuie rapidement en cours de journée. Si les attaques interviennent sous abris, ce qui est plutôt rare, il est souhaitable de les aérer et les ventiler.
Quelque soit la localisation de la parcelle touchée, les ouvriers ne doivent pas travailler dans celle-ci si la végétation est mouillée. De plus, les plantes très affectées et surtout les fruits malades doivent être sortis de la culture et détruits. En fin de culture, les résidus de culture seront aussi éliminés de la culture et détruits. Notons qu’un labour profond est préconisé dans les jours qui suivent la récolte afin d’enfouir les débris restants, et donc de réduire à terme le taux en inoculum du sol. Notons que cette dernière mesure doit être combinée avec une rotation culturale.
- Culture suivante
L’anthracnose ne nécessite normalement pas dans notre pays de mesures préventives particulières. Dans les parcelles déjà affectées et dans les pays où elle est encore un facteur limitant de production, nous proposons de suivre les mesures suivantes :
- ne pas utiliser des graines contaminées prélevées sur des fruits infectés et produire ces dernières dans des zones de cultures indemnes d’anthracnose. Signalons que des traitements de fruits de christophine à l’eau chaude à 51°C et avec un produit chloré à 1,5 % pendant 30 secondes permettent d’inhiber le développement de C. orbiculare ;
- instauré des rotations culturales n’impliquant pas de cucurbitacées durant au moins une année. Cette mesure n’est pas difficile à mettre en œuvre car C. orbiculare est relativement spécifique à cette famille botanique ;
- assurer un bon drainage aux parcelles cultivées ;
- détruire les cucurbitacées spontanées hébergeant parfois ce champignon dans la culture ou à proximité ;
- mettre en place, essentiellement dans les parcelles et dans les zones de production particulièrement atteintes, une protection fongicide préventive assez tôt (e-phy). Les traitements seront renouvelés tous les 10 jours et après chaque pluie importante ;
- éviter l’irrigation par aspersion, lui préférer l’apport localisé d’eau, et ne pas intervenir dans la parcelle lorsque les plantes sont mouillées.
Si l’on s’intéresse à la sensibilité des cucurbitacées à l’anthracnose, elles ne semblent pas toutes présenter la même réceptivité. Ainsi, la plupart des espèces sauvages (Luffa acutangula, Lagenaria siceraria, Benincasa hispida, Momordica charantia) seraient moins sensibles que les espèces cultivées. Cucurbita ecuadorensis et Cucurbita lundelliana présenteraient une bonne résistance. Cucumis anguria (concombre des Antilles) et Cucurbita martinezii (citrouille) serait sensibles. Soulignons que ces différences de comportement ont été observées dans des contextes variés, faisant intervenir certainement des souches présentant des virulences différentes. Ces informations doivent donc être utilisées avec le recul qu’il se doit.
La résistance à C. orbiculare a surtout été travaillée chez le concombre et la pastèque en Chine, aux États-Unis (Caroline du Nord), en Pologne, en Bulgarie notamment. Les différentes variétés commercialisées ne présentent pas toutes le même niveau de résistance. Si les conditions climatiques sont favorables à C. orbiculare, des attaques plus ou moins graves peuvent être constatées. Notons qu’il semble difficile de travailler la résistance à l’anthracnose chez le melon. Du matériel résistant a tout de même été décrit en Chine sur melon et melon amer.
Ajoutons que le melon oriental, la courge et la citrouille notamment seraient moins sensibles.
Quelques bio-pesticides ont été expérimentés sur l’anthracnose des cucurbitacées in vitro et au champ dans plusieurs pays du monde, ceci avec plus ou moins de succès : Trichoderma viride, Streptomyces sp. Streptomyces roseoflavus... Il en a été de même pour divers extraits de plantes : Azadirachta indica (margousier ou neem), Carya cathayensis, Asarum sieboldii, Anemarrhena asphodeloides (Zhi mu)...
Colletotrichum et Gloeosporium spp.
Anthracnoses
Généralités
- Plusieurs agents d'anthracnoses sont connus sur légumes, et en particulier sur ceux produits en zones tropicales à équatoriales. Dans ces zones, les Colletotrichum spp. rencontrés semblent avoir des gammes d'hôtes plus larges.
- Champignons assez largement répandus dans le monde, signalés dans de nombreux pays sur tous les continents.
- Plus ou moins polyphages, plusieurs espèces peuvent être rencontrés sur des légumes d'une même famille botanique. Méfiance, certains peuvent venir coloniser secondairement des tissus lésés par un envahisseur primaire.
- Responsables de taches sur les organes affectés, souvent bien délimitées, et parfois cernées par les nervures sur feuilles ; plus allongées sur les tiges et les fruits. Certaines espèces sont capables de s'attaquer aux racines produisant des microsclérotes sur ces dernières (figures 9 à 11), en particulier Colletotrichum coccodes qui provoque des pourritures racinaires sous abris en métropole, sur les porte-greffes tomate et aubergine, et sur piment.
- Plutôt observés en plein champ en zones tropicales.
- Des conceptacles plats et superficiels se forment sur les tissus lésés, des acervules (figures 1 à 5) plutôt caractéristiques produisant de très nombreuses spores en masses mucilagineuses (figures 6 et 7). Chez de nombreuses espèces des soies noires (ou setæ) sont observées au sein de ces structures (figure 8).
- Famille(s) botanique(s) sensible(s)
Solanacées* |
Cucurbitacées** |
|
|
|
* aubergine, poivron, tomate
** calebasse, citrouille, concombre, courge, courge spaghetti, courgette, christophine, giraumon, margose ou concombre amer, melon, pastèque, pâtisson, potiron , plusieurs espèces de Luffa, etc.
Biologie
- Conservation : se maintient dans le sol, en particulier sur les débris végétaux, ou sur divers substrats organiques. Les masses stromatiques (microsclérotes) qu'ils forment sur les fruits, représentent une forme de conservation certaine. Certains se maintiennent aussi sur les graines (C. lagenarium, complexes d'espèces associées aux poivrons et piment) qui se contaminent lors de leur extraction à partir de fruits infectés, et probablement sur diverses espèces végétales cultivées ou sauvages.
- Infection : les spores germant à la surface des organes végétaux pollués, et pénétration directe des tissus. Ensuite, du mycélium principalement intracellulaire envahit les tissus.
- Sporulation : production assez rapide d’acervules sur les lésions présentes sur les divers organes affectés.
- Dissémination : les spores*** regroupées sous la forme d'un mucus sont dispersées par l'eau et les éclaboussures d'eau, par le vent transportant les fines gouttelettes d'eau, par les ouvriers et les outils agricoles, et par certains insectes. Les graines contaminées contribuent également à la dissémination de cette maladie.
- Conditions favorables : l’humidité surtout influence les épidémies d'anthracnoses sur les légumes. Les contaminations ont souvent lieu à la suite de périodes humides, à la faveur des pluies et d'irrigations par aspersion.
*** Pour simplifier, les spores des Colletotrichum peuvent être soit ovales à oblongues, droites (C. gloesporioides, C. coccodes, C. orbiculare) ; soit arquées, falciformes, pointues aux extrémités (C. capsici).
Protection
- Ne pas utiliser des graines contaminées.
- Les espèces d’une même famille botanique ne semblent pas avoir la même sensibilité aux agents d’anthracnose. Certaines variétés de concombre sont résistantes à Gloeosporium orbiculare.
- Instaurer des rotations culturales n’impliquant pas des cultures sensibles, d'au minimum 2 à 3 ans.
- Détruire dans la culture ou à proximité les espèces végétales spontanées pouvant héberger ces champignons.
- Assurer un bon drainage aux parcelles cultivées.
- Eviter les irrigations par aspersion, leur préférer l’irrigation au goutte à goutte. Si elles sont indispensables, les réaliser le matin afin que la végétation ressuie rapidement en cours de journée.
- Sous abris, aérer au maximum.
- Ne pas faire travailler les ouvriers tant que la végétation est mouillée.
- Eviter les blessures sur fruits liées aux agissements d'autres bioagresseurs ou aux cueilleurs.
- Sortir de la culture et détruire les plantes affectées et surtout les fruits malades. Eliminer en fin de culture les résidus végétaux. Un labour profond peut permettre d’enfouir les débris restants, cette mesure doit être combinée avec une rotation culturale.
- Si besoin, pulvériser des fongicides en tenant compte des usages autorisés (e-phy)
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Fig. 5
Fig. 6
Fig. 7
Fig. 8
Fig. 9
Fig. 10
Fig. 11
Symptômes d'anthracnose sur aubergine
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Petites lésions chlorotiques irrégulières devenant rapidement nécrotiques sur feuilles. Un halo jaune plutôt marqué les ceinture (figures 1 à 5). L'anthracnose ne semble pas avoir une forte incidence sur le feuillage de l'aubergine.
- Lésions allongées et brunâtres sur tiges
- Taches circulaires humides s'étendant, brunissant et noircissant progressivement sur les fruits au fur et à mesure de leur maturation (figures 6 et 7). Les taches sont légèrement concaves et peuvent coalescer, et provoquer une pourriture de secteurs importants des fruits (figure 7), voire les dégrader entièrement. Altération des graines qui prennent une teinte rouille.
- Signes : présence sur les lésions de conceptacles plats et superficiels, des microsclérotes et des acervules, parfois répartis en cercles concentriques (figure 8). Les acervules produisant de très nombreuses spores en masses mucilagineuses de couleur rosâtre à saumon. Chez de nombreuses espèces de Colletotrichum des soies noires (ou setæ) sont observées au sein de ces structures.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur aubergine : C. gloeosporioides f. sp. melongenae, C. acutatum, C. truncatum
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Fig. 5
Fig. 6
Fig. 7
Fig. 8
Symptômes d'anthracnose sur poivron et piment
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Symptômes très fréquents et dommageables sur piment et poivron en zones tropicales.
- Taches irrégulières gris brun sur feuilles disposant d'un liseré brun sombre. Ces lésions semblent rarement observées sur les feuilles de piment et poivron (figures 1 à 5).
- Lésions allongées brunes et nécrotiques sur tiges.
- Taches circulaires humides et ambrées, s'étendant et noircissant progressivement sur fruits surtout lorsqu'ils virent au rouge (figures 6 et 7). Elles coalescent lorsqu'il y en a plusieurs sur le même fruit. certains fruits peuvent pourrir entièrement et se momifier. Altération des graines qui prennent une teinte rouille. Des symptômes apparaissent également en cours de conservation des fruits.
- Signes : présence sur les lésions de conceptacles plats et superficiels, des microsclérotes et des acervules, parfois répartis en cercles concentriques (figures 8 et 9). Les acervules produisant de très nombreuses spores en masses mucilagineuses de couleur rose à orangée. Chez de nombreuses espèces des soies noires (ou setæ) sont observées au sein de ces structures.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur piment* : C. acutatum, C. boninense, C. capsici, C. coccodes, C. dematium, C. gloesporioides, C. scovillei, C. truncatum, C. graminicola, etc.
* Ces différentes espèces semblent exprimer des comportements différents sur piment et poivron, n'affectant pas toutes les mêmes organes sur ces plantes. Notons aussi que certaines espèces seraient en fait des complexes d'espèces. De plus, plusieurs pathotypes ont été signalés dans le monde exprimant des pouvoirs pathogènes différents sur plusieurs espèces de Capsicum, voire sur la même espèce.
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Fig. 5
Fig. 6
Fig. 7
Fig. 8
Symptômes d'anthracnose sur tomate
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Petites lésions circulaires humides et ternes, brun clair, évoluant progressivement sur fruits. Au fur et à mesure de leur extension, elles deviennent concaves et leur centre brunit progressivement (figures 1 à 3)
- Plusieurs taches peuvent se développer en même temps sur le même fruit, en confluant elles finissent par couvrir de larges portions et donnent lieu à une pourriture.
- La chair sous-jacente peut être plutôt décolorée et de texture granuleuse.
- Ces symptômes peuvent diversifier en fonction de l'espèce de Colletotrichum sévissant.
- Signes : présence de structures brun foncé à noires au centre des lésions disposées parfois de façon concentrique : des microsclérotes. (figures 1 et 4) On peut y observer aussi des acervules dans lesquelles se dressent des soies noires (setae). Ces acervules produisent, en périodes d'humidité, des masses de spores muqueuses de couleur saumon bien visibles à la surface des lésions qui restent lisses et intactes.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur tomate : C. coccodes, C. gloeosporioides, C. dematium, C. acutatum, C. truncatum
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Symptômes d'anthracnose sur concombre
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Tous les organes aériens peuvent être affectés.
- Taches à lésions humides, plutôt circulaires, brunissant et rougissant progressivement avant de se nécroser (figures 1 à 4). Larges secteurs du limbe parfois affectés.
- Présence d'un halo translucide à jaunâtre autour des lésions, les tissus interne pouvant se décomposer et tomber conférant au limbe un aspect criblé. Parfois défoliation importante.
- Lésions chancreuses longitudinales sur tiges et pétioles, légèrement déprimées, de teinte beigeâtre (figure 5), avec présence parfois d'exsudats bruns.
- Taches circulaires sur fruits, sombres à noirâtres en leur centre (figure 6), gagnant les tissus internes.
- Signes : présence de nombreuses ponctuations noires, des stromas (figure 7), et de masses gélatineuses rose saumon, des acervules productrices de nombreuses spores et matérialisant la reproduction asexuée de Gloeosporium orbiculare. Notons que ces fructifications sont parfois disposées en cercles concentriques, qu'un feutrage mycélien blanc est parfois visible sur les lésions, et qu'elles peuvent être observées sur tous les organes affectés.
- Confusions possibles : cladosporiose, corynesporiose, alternariose, septoriose, bactériose.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur concombre : Gloeosporium orbiculare
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Fig. 5
Fig. 6
Fig. 7
Symptômes d'anthracnose sur courges
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Tous les organes aériens peuvent être affectés.
- Taches à lésions humides, circulaires à angulaires, brunissant progressivement avant de se nécroser (figures 1 et 2). Leur centre est plus terne à terme. Certaines d'entre-elles semblent s'être initiées à partir de nervures.
- Présence d'un halo jaune plutôt marqué autour des lésions (figure 2).
- Lésions chancreuses longitudinales sur tiges et pétioles, légèrement déprimées, de teinte beigeâtre (Figure 3), avec présence parfois d'exsudats bruns.
- Les fruits de courgette ne semblent pas très sensibles à ce champignon.
- Signes : présence de nombreuses ponctuations noires, des stromas, et de masses gélatineuses rose saumon, des acervules productrices de nombreuses spores et matérialisant la reproduction asexuée de Gloeosporium orbiculare. Notons que ces fructifications sont parfois disposées en cercles concentriques, qu'un feutrage mycélien blanc est parfois visible sur les lésions, et qu'elles peuvent être observées sur tous les organes affectés.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur concombre : Gloeosporium orbiculare
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Symptômes d'anthracnose sur giraumon
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Tous les organes aériens peuvent être affectés.
- Taches à lésions d'abord humides puis chlorotiques, plutôt circulaires (figures 1 et 2), brunissant et se nécrosant progressivement (figure 3). Larges secteurs du limbe parfois affectés.
- Présence d'un halo translucide à jaunâtre peu étendu autour des lésions, les tissus interne pouvant se décomposer et tomber conférant au limbe un aspect criblé.
- Lésions chancreuses longitudinales sur tiges et pétioles, légèrement déprimées, de teinte beigeâtre (figure 4), avec présence parfois d'exsudats bruns.
- Taches circulaires sur fruits, sombres à noirâtres en leur centre, gagnant les tissus internes.
- Signes : présence de nombreuses ponctuations noires, des stromas, et de masses gélatineuses rose saumon, des acervules productrices de nombreuses spores et matérialisant la reproduction asexuée de Gloeosporium orbiculare. Notons que ces fructifications sont parfois disposées en cercles concentriques, qu'un feutrage mycélien blanc est parfois visible sur les lésions, et qu'elles peuvent être observées sur tous les organes affectés.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur concombre : Gloeosporium orbiculare
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Symptômes d'anthracnose sur calebasse
- Organes attaqués :
Feuilles |
Fleurs |
Fruits |
Tige |
Vaisseaux |
Collet |
Racines |
- Symptômes :
- Tous les organes aériens peuvent être affectés.
- Taches à lésions d'abord humides puis chorotiques (figures 1 à 3), plutôt circulaires, brunissant et se nécrosant progressivement. Larges secteurs du limbe parfois affectés.
- Présence d'un halo translucide, puis jaune plutôt marqué et étendu autour des lésions (figure 3), les tissus interne pouvant se décomposer et tomber conférant au limbe un aspect criblé.
- Lésions chancreuses longitudinales sur tiges et pétioles, légèrement déprimées, humides puis de teinte beigeâtre (figure 4), avec présence parfois d'exsudats bruns.
- Taches circulaires sur fruits, sombres à noirâtres en leur centre, gagnant les tissus internes.
- Signes : présence de nombreuses ponctuations noires, des stromas, et de masses gélatineuses rose saumon, des acervules productrices de nombreuses spores et matérialisant la reproduction asexuée de Gloeosporium orbiculare. Notons que ces fructifications sont parfois disposées en cercles concentriques, qu'un feutrage mycélien blanc est parfois visible sur les lésions, et qu'elles peuvent être observées sur tous les organes affectés.
- Zones de production affectées :
Mayotte |
Réunion |
Guyane |
Guadeloupe |
Martinique |
Nouvelle-Calédonie |
Polynésie-Française |
- Colletotrichum spp. signalés sur concombre : Gloeosporium orbiculare
Fig. 1
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
Glomerella graminicola DJPolitis - Anthracnose de Maïs
Position systématique.
Classe Ascomycota, sous-classe Sordariomycetidae, ordre des Phyllachorales, famille des Phyllachoraceae, genre Glomerella.
Synonyme.
Colletotrichum graminicola (Ces.) Wilson.
Groupe biologique.
Hémibiotrophique.
Morphologie et biologie.
Le champignon endommage les racines des plantes, provoque la pourriture des tiges et le flétrissement des feuilles, infecte les oreilles et les graines de maïs. Sur les feuilles, les lésions sont longues (0,5-2 cm) et présentent parfois un bord rougeâtre ou orange. Ils peuvent pousser et fusionner, couvrant toutes les feuilles. Au début, les feuilles les plus basses puis les plus hautes sont endommagées. Les tiges sont infectées à différents stades du développement de la plante. Les parties externes de la tige sont décolorées. Les tiges sont légèrement destructibles. Le champignon hiverne sur les débris végétaux. La maladie est observée en hiver et en automne.
Distribution.
La forme foliaire de la maladie est observée dans le territoire de Primorskii en Extrême-Orient.
Écologie.
L'humidité élevée de l'air favorise le développement de la maladie. Cette maladie survient rarement si le temps est sec.
Signification économique.
L'anthracnose du maïs influe considérablement sur le rendement s'il couvre environ 40% de la surface de la feuille. La perte de rendement en cas de fort développement de la forme de la tige de l'anthracnose est liée à la flétrissure et à la verse des plantes. Les mesures de protection des plantes comprennent la rotation correcte des cultures, l'utilisation d'hybrides résistants et l'enfouissement des débris végétaux.
Date de dernière mise à jour : 29/12/2018
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